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嘉峪檢測網(wǎng) 2025-05-22 20:54
摘 要： 優(yōu)化減肥食品中蒽醌苷元類物質(zhì)的酸水解提取方法，并采用高效液相色譜法進(jìn)行測定。以番瀉苷元A、番瀉苷元B、蘆薈大黃素、大黃素、大黃酸、大黃酚、大黃素甲醚、橙黃決明素為對照品，以蒽醌苷元類物質(zhì)得率為考察指標(biāo)，在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上，采用響應(yīng)面法對酸水解提取蒽醌苷元類成分得率影響較大的因素（硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)、酸水解溫度、超聲輔助提取酸水解時(shí)間）進(jìn)行優(yōu)化，結(jié)果表明，酸水解提取蒽醌苷元類物質(zhì)最優(yōu)條件為甲醇沸水浴回流提取45 min，硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%，酸水解溫度為75 ℃，超聲輔助提取酸水解時(shí)間為50 min。
關(guān)鍵詞： 響應(yīng)面法； 高效液相色譜法； 酸水解； 蒽醌苷元； 番瀉苷元A； 番瀉苷元B
在當(dāng)今健康意識日益增強(qiáng)的社會(huì)背景下，減肥食品市場蓬勃發(fā)展，其中富含蒽醌類物質(zhì)的植物提取物因其獨(dú)特的生理活性和減肥功效備受關(guān)注。蒽醌類物質(zhì)不僅具有抗腫瘤[1]、抗炎[2]、抑菌[3]等活性，還在促進(jìn)腸道蠕動(dòng)、幫助消化、調(diào)節(jié)體內(nèi)脂肪代謝方面展現(xiàn)出巨大潛力[4?5]。然而，長期過量食用蒽醌類物質(zhì)會(huì)對人體健康造成危害，特別是大腸黑變病，在長期服用蒽醌類瀉藥的人群中發(fā)病率較高[6?8]。
藥用植物蒽醌類化合物主要存在于蓼科、鼠李科、茜草科、豆科、百合科等藥用植物中，如大黃、何首烏、虎杖、鼠李、茜草、巴戟天、番瀉葉、決明子、蘆薈等[9]，其中作為減肥瀉下藥物添加的主要為大黃、決明子、番瀉葉、蘆薈等。這些植物類瀉藥含有的蒽醌類成分為結(jié)合蒽醌和游離蒽醌，由于起瀉下作用的是總蒽醌類成分，因此需要研究一種將蒽醌類成分全部水解為蒽醌苷元的方法，從而測定總蒽醌的含量。橙黃決明素、蘆薈大黃素、大黃酸、大黃素、大黃酚和大黃素甲醚6種蒽醌苷元基本涵蓋了上述藥用植物中除番瀉苷以外的蒽醌苷元的基本母核。
在以往的研究中，提取蒽醌苷元的方法主要為酸水解[10?11]，測定方法有高效液相色譜法、高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[11?13]等，番瀉苷的測定方法有高效液相色譜法和高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[14?15]，而對于番瀉苷的水解方法以及番瀉苷苷元的測定研究甚少。對于同時(shí)添加了含有番瀉苷成分的藥物與其他蒽醌類藥物的樣品，目前沒有相應(yīng)的提取方法和測定方法對兩類成分進(jìn)行同時(shí)檢測。國家食品藥品監(jiān)督管理總局2019年發(fā)布的食品補(bǔ)充檢驗(yàn)方法中BJS 201917《食品中番瀉苷A、番瀉苷B和大黃素甲醚的測定》采用甲醇-甲酸銨溶液超聲提取，高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定食品和保健食品中番瀉苷A、番瀉苷B和大黃素甲醚；BJS 201916《食品中大黃酚和橙黃決明素的測定》采用甲醇提取、稀鹽酸水解的方法提取，高效液相色譜法測定食品和保健食品中大黃酚和橙黃決明素。這兩種標(biāo)準(zhǔn)方法分別對食品和保健食品中添加番瀉苷成分和某種其他蒽醌類成分藥物采用不同的提取和測定方法進(jìn)行了檢測，但兩種方法均不能同時(shí)測定含有上述兩種成分的樣品。筆者旨在探討一種酸水解方法，能夠同時(shí)水解番瀉苷與其他結(jié)合蒽醌，并對番瀉苷元與其他蒽醌苷元進(jìn)行同時(shí)測定，達(dá)到同時(shí)檢測既添加番瀉苷類成分又添加其他蒽醌類成分的樣品的目的，以期為減肥食品中蒽醌苷元類物質(zhì)的測定提供新的思路。
1. 實(shí)驗(yàn)部分
1.1 主要儀器與試劑
高效液相色譜儀：Waters 2695型，配二極管陣列檢測器，美國沃特世儀器有限公司。
電子分析天平：AB135-S型，感量為0.1 mg，瑞士梅特勒-托利多儀器有限公司。
高速萬能粉碎機(jī)：FW100型，天津市泰斯特儀器有限公司。
數(shù)顯恒溫水浴鍋：HH-4型，江蘇省金壇市榮華儀器制造有限公司。
全自動(dòng)氮吹濃縮儀：N1-28型，上海屹堯儀器科技發(fā)展有限公司。
多管渦旋混勻儀：MIX-200型，上海凈信實(shí)業(yè)發(fā)展有限公司。
高速離心機(jī)：CR21N型，日本東芝公司。
高純水發(fā)生器：Milli-Q型，美國密理博公司。
超聲波清洗器：DT512H型，德國BANDELIN公司。
甲醇：色譜純，美國賽默飛世爾有限公司。
二氯甲烷、磷酸、鹽酸、硫酸：分析純，國藥集團(tuán)化學(xué)制劑有限公司。
番瀉苷元A、番瀉苷元B標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)：純度(質(zhì)量分?jǐn)?shù))均大于95%，編號分別為CDAA-281145和CDAA-281144，上海安譜璀世標(biāo)準(zhǔn)技術(shù)服務(wù)有限公司。
大黃素、大黃素甲醚、大黃酸、蘆薈苷、大黃酚、橙黃決明素標(biāo)準(zhǔn)品：純度(質(zhì)量分?jǐn)?shù))均大于95%，編號分別為110756、110758、110757、110795、110796和111900，中國食品藥品檢定研究院。
番瀉葉藥材、蘆薈藥材、決明子藥材、大黃藥材：編號分別為120996、121149、121011和120902，中國食品藥品檢定研究院。
轟油暢益纖維粉固體飲料：批號72303041.B2，西安草樂樂生物科技有限公司。
1.2 儀器工作條件
色譜柱：BDS HYPERSILC18鍵合硅膠柱(250 mm×4.6 mm，5 μm，美國賽默飛世爾科技有限公司)；檢測波長：270 nm；柱溫：30 ℃；進(jìn)樣體積：10 μL；流動(dòng)相：A相為甲醇，B相為體積分?jǐn)?shù)0.1%的磷酸水溶液；流量：1.0 mL/min；洗脫方式：梯度洗脫，洗脫程序見表1。
表1 梯度洗脫程序
Tab. 1 Gradient washing program
1.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液制備
標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液：分別準(zhǔn)確稱取番瀉苷元A、番瀉苷元B標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)適量于100 mL容量瓶中，用0.1%碳酸氫鈉溶解并稀釋至標(biāo)線，配制成質(zhì)量濃度均為200 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液；分別準(zhǔn)確稱取橙黃決明素、蘆薈大黃素、大黃酸、大黃素、大黃酚、大黃素甲醚標(biāo)準(zhǔn)品適量于100 mL容量瓶中，用甲醇溶解(如溶解困難，可采用超聲輔助助溶)，并稀釋至標(biāo)線，配制成橙黃決明素、蘆薈大黃素、大黃酸、大黃素、大黃酚質(zhì)量濃度均為200 μg/mL，大黃素甲醚質(zhì)量濃度為100 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。
混合標(biāo)準(zhǔn)溶液：準(zhǔn)確移取瀉苷元A、番瀉苷元B、橙黃決明素、蘆薈大黃素、大黃酸、大黃素、大黃酚標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液各0.5 mL，大黃素甲醚標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液1.0 mL，置于同一10 mL容量瓶中，用甲醇溶解并稀釋至標(biāo)線，配制成各組分質(zhì)量濃度均為10 μg/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液，臨用現(xiàn)配。
1.3 實(shí)驗(yàn)步驟
1.3.1 樣品處理
將轟油暢益纖維粉固體飲料、番瀉葉藥材、蘆薈藥材、決明子藥材、大黃藥材按一定比例混合均勻，用高速萬能粉碎機(jī)粉碎，稱取粉碎后樣品1.0 g置于250 mL圓底燒瓶中，加入50 mL甲醇，于沸水浴中回流提取45 min。取出放冷至室溫，用甲醇補(bǔ)足減失的重量。將溶液轉(zhuǎn)移至50 mL離心管中，以8 000 r/min離心5 min，移取10 mL上清液至另一50 mL的離心管中，40 ℃氮?dú)獯蹈?。加?0 mL 15%硫酸溶液，75 ℃超聲處理50 min，冷卻至室溫后，用二氯甲烷重復(fù)萃取3次，每次10 mL，合并萃取液。萃取液在40 ℃氮?dú)獯蹈桑瑲堅(jiān)? mL甲醇溶解。
1.3.2 樣品測定
按1.2儀器條件，將混合標(biāo)準(zhǔn)溶液和試樣溶液等體積進(jìn)樣測定，得到相應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)溶液的色譜峰面積，以各組分標(biāo)準(zhǔn)溶液的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)，以對應(yīng)色譜峰面積為縱坐標(biāo)，外標(biāo)法定量。
2. 結(jié)果與討論
2.1 檢測波長的選擇
橙黃決明素在285 nm處有最大吸收，蘆薈大黃素、大黃酸、大黃素、大黃酚和大黃素甲醚在200～600 nm波長內(nèi)的吸收均呈現(xiàn)3個(gè)吸收峰，分別在約220、260～285和430 nm。番瀉苷元A和番瀉苷元B在200～600 nm波長內(nèi)有2個(gè)吸收峰，分別為270 和380 nm，為同時(shí)測定8種蒽醌苷元，選擇270 nm作為檢測波長。
2.2 色譜圖
標(biāo)準(zhǔn)品、樣品色譜圖分別見圖1、圖2。
圖1 標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖
Fig. 1 Chromatogram of standard
1—橙黃決明素； 2—蘆薈大黃素； 3—大黃酸； 4—番瀉苷元A； 5—番瀉苷元B； 6—大黃素； 7—大黃酚； 8—大黃素甲醚
圖2 樣品色譜圖
Fig. 2 Chromatogram of sample
1—橙黃決明素； 2—蘆薈大黃素； 3—大黃酸； 4—番瀉苷元A；5—番瀉苷元B； 6—大黃素； 7—大黃酚； 8—大黃素甲醚
2.3 提取方案的選擇
設(shè)計(jì)8組實(shí)驗(yàn)，分別考察樣品在先經(jīng)甲醇提取結(jié)合蒽醌，再用酸水解為游離蒽醌(實(shí)驗(yàn)A～實(shí)驗(yàn)D)與直接經(jīng)酸水解(實(shí)驗(yàn)E～實(shí)驗(yàn)H)所得的總蒽醌的含量，并同時(shí)考察相同濃度條件下硫酸與鹽酸的水解強(qiáng)度。
實(shí)驗(yàn)A和實(shí)驗(yàn)B：稱取樣品1.0 g，置于250 mL圓底燒瓶中，加入甲醇50 mL，于沸水浴回流提取1 h，放冷至室溫，以甲醇補(bǔ)足減失的質(zhì)量，以8 000 r/min離心5 min，移取10 mL上清液至50 mL離心管中，以40 ℃氮?dú)獯蹈伞＜尤?0 mL 20%硫酸溶液(實(shí)驗(yàn)A)或10 mL 20%鹽酸溶液(實(shí)驗(yàn)B)，于65 ℃以超聲處理1 h，冷卻至室溫后，用二氯甲烷振搖提取3次，每次10 mL，合并二氯甲烷層，以40 ℃氮?dú)獯蹈?，殘?jiān)? mL甲醇溶解。
實(shí)驗(yàn)C和實(shí)驗(yàn)D：稱取樣品1.0 g，置于250 mL圓底燒瓶中，加入甲醇50 mL，于沸水浴回流提取1 h，放冷至室溫，以甲醇補(bǔ)足減失的質(zhì)量，以8 000 r/min離心5 min，移取10 mL上清液至50 mL離心管中，以40 ℃氮?dú)獯蹈伞＜尤?0 mL 20%硫酸溶液(實(shí)驗(yàn)C)或10 mL 20%鹽酸溶液(實(shí)驗(yàn)D)，轉(zhuǎn)移入250 mL圓底燒瓶中，在沸水浴中回流水解1 h，冷卻至室溫后，用二氯甲烷振搖提取3次，每次10 mL，合并二氯甲烷層，以40 ℃氮?dú)獯蹈桑瑲堅(jiān)? mL甲醇溶解。
實(shí)驗(yàn)E和實(shí)驗(yàn)F：稱取樣品1.0 g，置于250 mL圓底燒瓶中，加入10 mL 20%硫酸(實(shí)驗(yàn)E)或10 mL 20%鹽酸溶液(實(shí)驗(yàn)F)，在沸水浴中回流水解1 h，冷卻至室溫后，用二氯甲烷振搖提取3次，每次10 mL，合并二氯甲烷層，以40 ℃氮?dú)獯蹈?，殘?jiān)? mL甲醇溶解。
實(shí)驗(yàn)G和實(shí)驗(yàn)H：稱取樣品1.0 g，置于50 mL離心管中，加入10 mL 20%硫酸(實(shí)驗(yàn)G)或10 mL 20%鹽酸溶液(實(shí)驗(yàn)H)，于65 ℃超聲處理1 h，冷卻至室溫后，用二氯甲烷振搖提取3次，每次10 mL，合并二氯甲烷層，以40 ℃氮?dú)獯蹈桑瑲堅(jiān)? mL甲醇溶解。
采用不同方法提取8種蒽醌苷元及總蒽醌的含量，結(jié)果見表2。
表2 提取方案的選擇實(shí)驗(yàn)結(jié)果
Tab. 2 Experimental results of extraction scheme selection ( μg/g )
由表2可知，總蒽醌含量：實(shí)驗(yàn)A＞實(shí)驗(yàn)G＞實(shí)驗(yàn)B＞實(shí)驗(yàn)F＞實(shí)驗(yàn)E＞實(shí)驗(yàn)H＞實(shí)驗(yàn)C＞實(shí)驗(yàn)D，所以提取方案初步擬定為實(shí)驗(yàn)A條件，即采用甲醇沸水浴回流提取結(jié)合蒽醌，硫酸水溶液作為酸水解溶劑，超聲提取作為酸水解方法水解得到總蒽醌，之后用二氯甲烷萃取蒽醌化合物。
2.4 單因素試驗(yàn)
選取對提取效果影響相對較大的4個(gè)因素，即甲醇水浴提取時(shí)間、硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)、酸水解時(shí)間、酸水解溫度進(jìn)行單因素試驗(yàn)。
2.4.1 甲醇水浴提取時(shí)間
稱取樣品1.0 g，置于250 mL圓底燒瓶中，加入甲醇50 mL，在硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%、酸水解時(shí)間為1 h、酸水解溫度為65 ℃的條件下，分別采用沸水浴回流提取時(shí)間為30、45、60 min進(jìn)行試驗(yàn)，確定最佳甲醇水浴提取時(shí)間，結(jié)果見表3。由表3可知，在30～45 min內(nèi)，蒽醌類物質(zhì)的含量隨提取時(shí)間的增加而增加，在提取時(shí)間為45 min時(shí)達(dá)到峰值。當(dāng)提取時(shí)間繼續(xù)增加時(shí)，提取的蒽醌類物質(zhì)的含量減少。
表3 不同甲醇提取時(shí)間下蒽醌含量的測定結(jié)果
Tab. 3 Measurement results of anthraquinone content under different methanol extraction times ( μg/g )
2.4.2 硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)
稱取樣品1.0 g，置于250 mL圓底燒瓶中，加入甲醇50 mL，在甲醇水浴提取時(shí)間45 min、酸水解時(shí)間為1 h、酸水解溫度為65 ℃的條件下，分別采用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%、20%、25%的硫酸進(jìn)行試驗(yàn)，確定硫酸最佳質(zhì)量分?jǐn)?shù)，結(jié)果見表4。由表4可知，硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%～20%時(shí)，蒽醌類物質(zhì)的含量隨硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)的增大而增加，在硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為20%時(shí)達(dá)到峰值。當(dāng)硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)繼續(xù)增加時(shí)，提取的蒽醌類物質(zhì)的含量增加不顯著。
表4 不同硫酸濃度下蒽醌含量的測定結(jié)果
Tab. 4 Measurement results of anthraquinone content under different sulfuric acid concentrations ( μg/g )
2.4.3 酸水解時(shí)間的選擇
稱取樣品1.0 g，置于250 mL圓底燒瓶中，加入甲醇50 mL，在甲醇水浴提取時(shí)間45 min、硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%、酸水解溫度為65 ℃的條件下，分別采用酸水解時(shí)間30、45、55、60 min進(jìn)行試驗(yàn)，確定最佳酸水解時(shí)間，結(jié)果見表5。由表5可知，在30～55 min內(nèi)，蒽醌類物質(zhì)的含量隨水解時(shí)間增加而增加，在酸水解時(shí)間為55 min時(shí)達(dá)到峰值。酸水解時(shí)間繼續(xù)增加時(shí)，提取的蒽醌類物質(zhì)的含量增加不顯著。
表5 不同酸水解時(shí)間下蒽醌含量的測定結(jié)果
Tab. 5 Measurement results of anthraquinone content under different acid hydrolysis times ( μg/g )
2.4.4 酸水解溫度
稱取樣品1.0 g，置于250 mL圓底燒瓶中，加入甲醇50 mL，在甲醇水浴提取時(shí)間45 min、硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%、酸水解時(shí)間為1 h的條件下，分別采用酸水解溫度45、65、80 ℃進(jìn)行試驗(yàn)，確定最佳酸水解溫度，結(jié)果見表6。由表6可知，在45～65 ℃內(nèi)，蒽醌類物質(zhì)的含量隨溫度的升高而增加，在酸水解溫度為65 ℃時(shí)達(dá)到峰值。當(dāng)酸水解溫度繼續(xù)升高時(shí)，提取的蒽醌類物質(zhì)的含量增加不顯著。
表6 不同酸水解溫度下蒽醌含量的測定結(jié)果
Tab. 6 Measurement results of anthraquinone content at different acid hydrolysis temperatures ( μg/g )
通過單因素試驗(yàn)得到優(yōu)化條件為：甲醇水浴提取時(shí)間45 min，硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為20%、酸水解時(shí)間55 min、酸水解溫度65 ℃。其中硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)、酸水解時(shí)間和酸水解溫度對蒽醌類物質(zhì)的含量影響較為顯著，所以在后續(xù)響應(yīng)面試驗(yàn)中選擇硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)、酸水解時(shí)間和酸水解溫度3個(gè)因素分析。
2.5 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果及分析
2.5.1 響應(yīng)面分析因素水平的設(shè)計(jì)及分析
根據(jù)Box-Behnken設(shè)計(jì)的原理，在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上，選取硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)、酸水解溫度、酸水解時(shí)間3個(gè)因素，以總蒽醌含量作為響應(yīng)值，采用3因素3水平的響應(yīng)面分析方法優(yōu)化酸水解同時(shí)提取番瀉苷元與其他蒽醌苷元的工藝參數(shù)，結(jié)果見表7。
表7 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果
Tab. 7 Experimental design and results of Box-Behnken
表8為回歸模型方差分析結(jié)果。由表8可知，模型的F值為29.88，P值小于0.050 0，這表明模型在統(tǒng)計(jì)上是顯著的，說明該試驗(yàn)方法是合理且可靠的。與此同時(shí)，失擬項(xiàng)的P值為1.11，高于0.05，不顯著，表明試驗(yàn)結(jié)果受所選因素及其他因素影響很小，方程式成立，方法可靠。
表8 回歸模型方差分析結(jié)果
Tab. 8 Results of analysis of variance of regession model
通過對試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸擬合得到總蒽醌含量(Y)對硫酸濃度(A)、酸水解溫度(B)、酸水解時(shí)間(C)的二次回歸模型方程如下：
Y=320.14-23.75A+64.88B-16.03C+3.38AB+
5.97 AC-0.348 5BC-3.05A2-1.85B2+9.46C2
表9展示回歸模型擬合統(tǒng)計(jì)量。由表9的分析結(jié)果顯示，模型的預(yù)測決定系數(shù)R²為0.793 6，而調(diào)整后的決定系數(shù)R²為0.942 0，這兩者的差異小于0.2，表示模型的預(yù)測精度和解釋能力都很高。模型的決定系數(shù)R²為0.974 6，進(jìn)一步驗(yàn)證了模型能較好地反映硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)、酸水解溫度和酸水解時(shí)間與總蒽醌含量之間的關(guān)系。
表9 回歸模型擬合統(tǒng)計(jì)量
Tab. 9 Fit Statistics of regession model
2.5.2 模型驗(yàn)證性試驗(yàn)
由Design-Expert 13軟件繪制3D Surface，可以直觀地分析各影響因素之間對響應(yīng)值的影響大小，響應(yīng)面坡度越陡峭，說明該因素交互作用越顯著(見圖3)。以總蒽醌含量為指標(biāo)進(jìn)行酸水解工藝優(yōu)化得到的最佳提取條件和響應(yīng)值：硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15.870%，酸水解溫度為74.913 ℃，酸水解時(shí)間為50.078 min，總蒽醌含量為4.31 mg/g。為驗(yàn)證提取工藝的可行性，將上述條件作以下修改：硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%，酸水解溫度為75 ℃，酸水解時(shí)間為50 min，并以此來驗(yàn)證。驗(yàn)證3次后，得到總蒽醌的平均含量為4.35 mg/g，相對誤差為3.05%，小于10%。證明響應(yīng)面法得到提取蒽醌苷元類物質(zhì)的最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件是可行可靠的。
圖3 各因素交互作用對總蒽醌提取效率的影響
Fig. 3 Effect of interaction of various factors on the extraction effect of total anthraquinone
3. 結(jié)論
通過響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)，運(yùn)用Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)，確定了減肥食品中蒽醌苷元類物質(zhì)提取的最佳條件：硫酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%，酸水解溫度為75 ℃，酸水解時(shí)間為50 min。以此條件提取的總蒽醌含量為4.35 mg/g。
實(shí)驗(yàn)過程中設(shè)計(jì)了多種實(shí)驗(yàn)方案，由對比實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)得出，樣品在酸水解前進(jìn)行甲醇水浴提取，可以使蒽醌類成分充分游離出來，有利于促進(jìn)蒽醌類成分的水解。對比兩種酸的水解效率，相同質(zhì)量分?jǐn)?shù)下硫酸的提取效率比鹽酸的提取效率高，由于硫酸比鹽酸更穩(wěn)定，加熱的過程中不易揮發(fā)，在水解的過程中質(zhì)量分?jǐn)?shù)更高更穩(wěn)定。
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引用本文： 黃媛，孔祥翔，程亮 . 應(yīng)用響應(yīng)面法優(yōu)化酸水解同時(shí)提取番瀉苷元及其他蒽醌苷元的方法［J］. 化學(xué)分析計(jì)量，2025，34（2）： 25. (HUANG Yuan, KONG Xiangxiang, CHENG Liang. Optimization for simultaneous extraction of sennosides and other anthraquinone glycosides by acid hydrolysis using response surface methodology[J]. Chemical Analysis and Meterage, 2025, 34(2): 25.)
來源：化學(xué)分析計(jì)量
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