您當(dāng)前的位置:檢測(cè)資訊 > 實(shí)驗(yàn)管理
嘉峪檢測(cè)網(wǎng) 2025-08-08 22:13
摘 要: 建立蒽酮-硫酸分光光度法測(cè)定牛血漿試驗(yàn)液中的菊粉。在含有菊粉的血漿樣品中加入三氯乙酸除蛋白,以3 000 r/min轉(zhuǎn)速離心,取上清液過(guò)濾后進(jìn)行測(cè)定。測(cè)定波長(zhǎng)為627 nm,蒽酮試劑用量為樣品溶液體積的10倍,于60 ℃水浴中顯色反應(yīng)10 min,樣品溶液稀釋至4倍體積。菊粉質(zhì)量濃度在25~150 mg/L范圍內(nèi)與吸光度具有良好的線(xiàn)性關(guān)系,線(xiàn)性相關(guān)系數(shù)為0.999 4,檢出限為1.49 mg/L。樣品加標(biāo)回收率為98.12%~101.53%,測(cè)定結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.74%(n=5)。該方法操作簡(jiǎn)單,適用于血漿試驗(yàn)液中菊粉的測(cè)定。
關(guān)鍵詞: 菊粉; 血漿試驗(yàn)液; 蒽酮-硫酸分光光度法
菊粉又稱(chēng)菊糖,主要來(lái)源于植物,是一種多糖聚合物,其相對(duì)分子質(zhì)量從幾百到幾千不等,廣泛應(yīng)用于食品和醫(yī)藥領(lǐng)域[1?2]。菊粉在醫(yī)藥領(lǐng)域可用作腎功能診斷劑[3?4],菊粉的篩選系數(shù)主要用于評(píng)估高通量透析器對(duì)中分子物質(zhì)的清除能力。篩選系數(shù)是通過(guò)透析器濾出液溶質(zhì)濃度與透析器血液入口溶質(zhì)濃度及血液出口溶質(zhì)濃度計(jì)算而得,因此需要檢測(cè)試驗(yàn)液中菊粉的濃度。目前菊粉的檢測(cè)主要是針對(duì)農(nóng)作物中的菊粉,檢測(cè)方法主要有分光光度法、高效液相色譜法、離子色譜法等[5?7]。分光光度法有3,5-二硝基水楊酸法、苯酚-硫酸法和蒽酮-硫酸法[8?9],高效液相色譜法[10?11]和離子色譜法[12?13]多數(shù)需要將菊粉通過(guò)強(qiáng)酸或者菊粉酶水解后進(jìn)行測(cè)定,且色譜法對(duì)儀器設(shè)備以及樣品處理的要求較高。
現(xiàn)行醫(yī)療器械行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)YY 0053—2016《血液透析及相關(guān)治療 血液透析器、血液透析濾過(guò)器、血液濾過(guò)器和血液濃縮器》中規(guī)定了菊粉的篩選系數(shù)應(yīng)符合生產(chǎn)企業(yè)的規(guī)定,其首選試驗(yàn)液為抗凝牛血漿或者抗凝牛全血。有研究報(bào)道采用酶聯(lián)免疫法測(cè)定動(dòng)物血清或尿液中的菊粉質(zhì)量濃度[14],但關(guān)于血漿試驗(yàn)液中菊粉質(zhì)量濃度檢測(cè)方法的研究報(bào)道很少,有文獻(xiàn)報(bào)道采用微量比色法測(cè)定動(dòng)物血漿中的菊粉質(zhì)量濃度[15],但該方法操作步驟繁瑣、試劑用量多,不利于進(jìn)行批量試驗(yàn)。筆者用三氯乙酸[16?17]對(duì)牛血漿樣品進(jìn)行預(yù)處理,除去血漿中的蛋白質(zhì),采用蒽酮硫酸法測(cè)定其中的菊粉質(zhì)量濃度。該方法操作簡(jiǎn)單、快速、試劑用量較少、準(zhǔn)確性好,為血漿中菊粉質(zhì)量濃度的測(cè)定提供了有效的檢測(cè)手段。
1 實(shí)驗(yàn)部分
1.1 主要儀器與試劑
紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):Lambda 365型,美國(guó)珀金埃爾默股份有限公司。
低速臺(tái)式離心機(jī):TDL-5-A型,上海安亭科學(xué)儀器廠。
電子天平:SECURA224-1CN型,感量為0.1 mg,德國(guó)賽多利斯集團(tuán)。
純水機(jī):Synergy UV型,美國(guó)默克密理博有限公司。
渦旋混勻器:Vortex 3型,艾卡(廣州)儀器設(shè)備有限公司。
菊糖:生化試劑,上海阿拉丁生化科技股份有限公司。
三氯乙酸、蒽酮:均為分析純,上海阿拉丁生化科技股份有限公司。
硫酸:分析純,廣州化學(xué)試劑廠。
抗凝牛血漿:抗凝劑為檸檬酸鈉,廣州蕊特生物科技有限公司。
1.2 樣品處理
在抗凝牛血漿中加入一定量的菊粉(菊粉質(zhì)量濃度為300~400 mg/L),充分?jǐn)嚢枞芙夂笞鳛橥肝銎骱Y選系數(shù)試驗(yàn)液,分別取透析器血液入口端、血液出口端、濾出液端的溶液作為樣品檢驗(yàn)液。在樣品檢驗(yàn)液中加入等體積的三氯乙酸溶液(1.2 mol/L,下同),渦旋混勻,沉淀后離心30 min (轉(zhuǎn)速為3 000 r/min),取上清液并過(guò)濾,濾液作為樣品待測(cè)液,此時(shí)樣品待測(cè)液中菊粉質(zhì)量濃度為150~200 mg/L),置于4 ℃保存。
1.3 溶液配制
菊粉儲(chǔ)備液:1 000 mg/L,精密稱(chēng)取1 g菊糖,用純水溶解后轉(zhuǎn)移至1 000 mL容量瓶中,用純水定容至標(biāo)線(xiàn),混勻。蒽酮試劑:精密稱(chēng)取蒽酮0.28 g,溶于40 mL水與100 mL硫酸的混合液中,避光保存。菊粉系列工作溶液:將菊粉儲(chǔ)備液用水稀釋?zhuān)渲瞥少|(zhì)量濃度分別為50、100、150、200、250、300 mg/L的系列溶液,在系列溶液中分別加入等體積的三氯乙酸溶液,得到質(zhì)量濃度分別為25、50、75、100、125、150 mg/L的菊粉系列工作溶液。
1.4 實(shí)驗(yàn)方法
1.4.1 方法原理
樣品檢驗(yàn)液中的多糖在硫酸作用下脫水生成糠醛,與蒽酮縮合成藍(lán)綠色糠醛衍生物,該物質(zhì)在一定濃度范圍內(nèi),其顏色深淺與溶液中糖的濃度成正比[18]。利用反應(yīng)產(chǎn)物吸光度與糖濃度間的線(xiàn)性關(guān)系,實(shí)現(xiàn)對(duì)菊粉質(zhì)量濃度的定量測(cè)定。
1.4.2 樣品測(cè)定
以三氯乙酸水溶液(三氯乙酸溶液與純水體積比為1∶1)作空白參比,取200 μL菊粉系列溶液,分別加入2 mL蒽酮試劑,渦旋混勻后置于60 ℃水浴中反應(yīng)10 min,迅速冷卻至室溫,在627 nm波長(zhǎng)下依次測(cè)定菊粉系列工作溶液的吸光度,以溶液中菊粉質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)工作曲線(xiàn)。取100 μL 經(jīng)1.2處理后的樣品待測(cè)液,加入100 μL純水,混勻后加入2 mL蒽酮試劑,渦旋混勻,置于60 ℃水浴中反應(yīng)10 min,迅速冷卻至室溫,在627 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度,用標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)法計(jì)算樣品中菊粉的質(zhì)量濃度。
2 結(jié)果與討論
2.1 吸收波長(zhǎng)的選擇
不含三氯乙酸的菊粉溶液和含有三氯乙酸的菊粉溶液在可見(jiàn)光區(qū)的吸收光譜如圖1所示。

圖1 菊粉溶液的紫外-可見(jiàn)吸收光譜圖
Fig. 1 UV-VIS absorption spectra of inulin solutions
由圖1可以看出,不含三氯乙酸和含有三氯乙酸的菊粉溶液均在627 nm波長(zhǎng)附近出現(xiàn)最大吸收峰,這與蒽酮-硫酸法測(cè)定水溶液中多糖含量的檢測(cè)吸收波長(zhǎng)在620 nm左右的研究結(jié)果相符[18?19],表明三氯乙酸對(duì)菊粉溶液顯色反應(yīng)產(chǎn)物的吸收波長(zhǎng)無(wú)明顯影響,對(duì)吸光度影響也較小,因此,選擇檢測(cè)波長(zhǎng)為627 nm。
2.2 蒽酮試劑用量的確定
取250 mg/L的菊粉溶液100 μL,加入三氯乙酸溶液100 μL,分別加入蒽酮試劑1、2、4 mL (蒽酮試劑與測(cè)試液的體積比分別為5∶1、10∶1、20∶1),渦旋混勻,其中加入1 mL蒽酮試劑的菊粉溶液出現(xiàn)渾濁,其余菊粉溶液按照1.4.2實(shí)驗(yàn)方法顯色反應(yīng)10 min后,加入2 mL蒽酮試劑的菊粉溶液呈較深的藍(lán)綠色,加入4 mL蒽酮試劑的菊粉溶液呈很深的藍(lán)綠色。在627 nm處測(cè)定吸光度,加入2 mL蒽酮試劑的菊粉溶液吸光度接近1.0,加入4 mL蒽酮試劑的菊粉溶液吸光度接近2.0。吸光度值過(guò)大可能會(huì)出現(xiàn)偏離朗伯-比爾定律的情況,測(cè)量誤差會(huì)增大,因此選擇蒽酮試劑的加入體積為2 mL,即蒽酮試劑的體積與測(cè)試液的體積比為10∶1。
2.3 顯色反應(yīng)時(shí)間的確定
取250 mg/L的菊粉溶液100 μL加入100 μL三氯乙酸溶液,加入蒽酮試劑2 mL,渦旋混勻,于60 ℃水浴中分別顯色反應(yīng)5、8、10、15、20 min,迅速冷卻至室溫,在627 nm波長(zhǎng)下分別平行測(cè)定3次吸光度,結(jié)果如圖2所示。由圖2可以看出,菊粉溶液的吸光度隨著反應(yīng)時(shí)間的增加呈現(xiàn)出先增大后減小的趨勢(shì),反應(yīng)時(shí)間在10 min和15 min時(shí)吸光度差別不大,10 min時(shí)吸光度最大,因此選擇顯色反應(yīng)時(shí)間為10 min。

圖2 菊粉溶液在不同顯色反應(yīng)時(shí)間時(shí)的吸光度
Fig. 2 The absorbance of inulin solutions at different staining reaction times
2.4 測(cè)試液稀釋比例的選擇
取1.2中的樣品待測(cè)液100 μL,分別加入0、50、100、150、200 μL純水(相當(dāng)于樣品溶液分別稀釋至2、3、4、5、6倍體積),對(duì)應(yīng)加入10倍體積的蒽酮試劑,按照1.4.2中實(shí)驗(yàn)方法顯色反應(yīng)10 min,迅速冷卻至室溫后,在627 nm波長(zhǎng)下分別平行測(cè)定3次吸光度,以平均值作為測(cè)定值,結(jié)果如圖3所示。由圖3可以看出,隨著樣品溶液稀釋倍數(shù)的增大,溶液吸光度逐漸減小。根據(jù)實(shí)際樣品的菊粉質(zhì)量濃度和標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的最大濃度點(diǎn),選擇吸光度在0.8左右為宜,因此確定將測(cè)試液稀釋至4倍體積。

圖3 菊粉溶液不同稀釋倍數(shù)時(shí)的吸光度
Fig. 3 The absorbance of inulin solutions at different dilution ratios
2.5 線(xiàn)性方程與檢出限
按照1.4.2方法測(cè)定菊粉系列溶液的吸光度,以溶液中菊粉質(zhì)量濃度(ρ)為橫坐標(biāo),以吸光度(A)為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)工作曲線(xiàn),得標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)方程為A=0.006 2ρ-0.015 7,相關(guān)系數(shù)為0.999 4,表明菊粉的質(zhì)量濃度在25~150 mg/L范圍內(nèi)與吸光度呈良好的線(xiàn)性關(guān)系。在相同測(cè)試條件下,重復(fù)測(cè)定空白溶液20次,得到吸光度的標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.003 07。根據(jù)國(guó)際純粹和應(yīng)用化學(xué)聯(lián)合會(huì)(IUPAC)的規(guī)定,檢出限為空白值的3倍標(biāo)準(zhǔn)差與標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的斜率之比,計(jì)算得該方法的檢出限為1.49 mg/L。
2.6 精密度試驗(yàn)
取菊粉篩選系數(shù)檢驗(yàn)液,按照1.2方法處理,得到的樣品待測(cè)液按照1.4.2測(cè)定吸光度,平行測(cè)定5次,精密度試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表1所示。由表1可知,測(cè)定結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.74%,表明該方法具有良好的精密度。
表1 精密度試驗(yàn)結(jié)果
Tab. 1 Results of precision test

2.7 穩(wěn)定性試驗(yàn)
取菊粉篩選系數(shù)檢驗(yàn)液按照1.2方法處理,得到的樣品待測(cè)液按照1.4.2方法進(jìn)行顯色反應(yīng),冷卻至室溫,分別于第0、5、10、20、30、60、120 min測(cè)定吸光度,穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2。由表2可知,測(cè)定結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.28%,表明樣品待測(cè)液在120 min內(nèi)穩(wěn)定性良好。
表2 穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
Tab. 2 Results of stability test

2.8 樣品加標(biāo)回收試驗(yàn)
取菊粉篩選系數(shù)檢驗(yàn)液按照1.2方法處理,取7份處理后的樣品待測(cè)液,1份用于測(cè)定本底值,其余6份各加入50 mg/L含有三氯乙酸的菊粉溶液,按照1.4.2方法進(jìn)行處理和測(cè)定,計(jì)算加標(biāo)回收率,結(jié)果見(jiàn)表3。由表3可知,菊粉的加標(biāo)回收率為98.12%~101.53%,平均回收率為99.55%,表明該方法測(cè)定血漿試驗(yàn)液中的菊粉質(zhì)量濃度具有良好的準(zhǔn)確性。
表3 樣品加標(biāo)回收試驗(yàn)結(jié)果
Tab. 3 Results of samples spiked recovery rate

3 結(jié)論
(1) 采用蒽酮-硫酸分光光度法建立了牛血漿試驗(yàn)液中菊粉質(zhì)量濃度的測(cè)定方法,分別對(duì)顯色劑用量、測(cè)試液稀釋比例、顯色時(shí)間等檢測(cè)條件進(jìn)行了優(yōu)化,確定了最佳測(cè)定波長(zhǎng)為627 nm,選用顯色劑與測(cè)試液的體積比為10∶1,顯色時(shí)間為10 min,樣品測(cè)試液稀釋至4倍體積。
(2) 該方法使用的顯色劑用量較少、測(cè)定樣品需求量少、反應(yīng)時(shí)間較短,在不影響檢測(cè)準(zhǔn)確性的同時(shí)減少了檢測(cè)成本,檢測(cè)過(guò)程操作簡(jiǎn)便快捷、對(duì)硬件要求低、精密度高,可用于血漿試驗(yàn)液中菊粉的測(cè)定。
參考文獻(xiàn)
1 LIN Xiaojun,ZHANG Xuanyi,XU Baojun. Differences in physicochemical,rheological,and prebiotic properties of inulin isolated from five botanical sources and their potential applications[J]. Food Research International,2024,180: 114 048.
2 贠航,張曉文,郭耀東.菊粉在醫(yī)藥和食品領(lǐng)域應(yīng)用的研究進(jìn)展[J].食品與藥品,2024,26(3): 305.
YUN Hang,ZHANG Xiaowen,GUO Yaodong. Progress on application of inulin in the fields of medicine and food[J]. Food and Drug,2024,26(3): 305.
3 丁奕如,張超穎,謝賀新.腎小球?yàn)V過(guò)率活體實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)熒光示蹤劑的研究進(jìn)展[J].高等學(xué)校化學(xué)學(xué)報(bào),2022,43(12): 299.
DING Yiru,ZHANG Chaoying,XIE Hexin. Recent advances on fluorescent tracers for in vivo real-time monitoring glomerular filtration rate[J]. Chemical Journal of Chinese Universities,2022,43(12): 299.
4 劉琳,姜世敏,張浩軍,等.改良的熒光標(biāo)記菊粉清除率檢測(cè)法在糖尿病小鼠腎損傷評(píng)估中的應(yīng)用[J].中日友好醫(yī)院學(xué)報(bào),2022,36(4): 221.
LIU Lin,JIANG Shimin,ZHANG Haojun,et al. Improved method of fluorescence labeling insulin clearance used in the evaluation of renal injury of diabetic mice[J]. Journal of China-Japan Friendship Hospital,2022,36(4): 221.
5 王炳英,丁玉珍,劉鋼,等.特醫(yī)食品中植物源新食品原料測(cè)定方法研究進(jìn)展[J].食品安全質(zhì)量檢測(cè)學(xué)報(bào),2021,12(2): 740.
WANG Bingying,DING Yunzhen,LIU Gang,et al. Research progress on method of determination of the plant-novel food in food for special medical purpose[J]. Journal of Food Safety and Quality,2021,12(2): 740.
6 WOUTERS R,THEIS S,MERTENS L,et al. Inulin[J]. Ullmann's Encyclopedia of Industrial Chemistry,2022,12: 1.
7 LATINOVIC D. HPLC Q-TOF LC/MS analysis of inulin in foods:development of an innovative chromatography method for nutritional enhancement[C]//MEDICON′23 and CMBEBIH′23. Berlin:Springer,2024: 856.
8 ERIS F R,PAMELA V Y,KUSUMASARI S,et al. Extraction of inulin from Beneng tuber (Xanthosoma undipes) and its application to yogurt[J]. Future Foods,2024,9: 100 339.
9 田冰.洋姜菊糖提取純化及深加工研究應(yīng)用[D].濟(jì)南:齊魯工業(yè)大學(xué),2019.
TIAN Bing. Study and application of extraction,purification and deep processing of inulin from jerusalem artichoke[D]. Jinan:Qilu University of Technology,2019.
10 PEROVIC J,KOJIC J,KRULJ J,et al. Inulin determination by an improved HPLC-ELSD method[J]. Food Analytical Methods,2022,15: 1 001.
11 WONGSANITTAYARAK J,LEANGNIM N,UNBAN K,et al. Integrated enzymatic hydrolysis of crude red onion extract and yeast treatment for production and purification of short-chain inulin and inulin neoseries oligosaccharides[J]. Journal of Agriculture and Food Research,2024,18: 101 353.
12 賈鵬禹,孫蕊,項(xiàng)洪濤,等.離子色譜法測(cè)定工藝過(guò)程中菊粉含量[J].藥物生物技術(shù),2018,25(3): 237.
JIA Pengyu,SUN Rui,XIANG Hongtao,et al. Determination of inulin in production process by ion chromatography[J]. Pharmaceutical Biotechnology,2018,25(3): 237.
13 朱坤福.特醫(yī)食品中植物源新食品原料測(cè)定方法研究[J].中國(guó)食品工業(yè),2022(17): 58.
ZHU Kunfu. Method of determination of the plant-novel food in food for special medical purpose[J]. China Food Industry,2022(17): 58.
14 張丹陽(yáng).終末期腎病未透析患者腎小球?yàn)V過(guò)率測(cè)量和公式估算優(yōu)選及其高鉀血癥時(shí)24小時(shí)尿鉀排泄量計(jì)算模型創(chuàng)建[D].北京:北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院,2023.
ZHANG Danyang. Gptirnization of glomerular filtration rate measurement and equation estimation in non-dialysis patients with end-stage renal disease and estabiishment of a caicuiation model for 24-hour urinary potassium excretion in hyperkaiemia[D]. Beijing: Peking Union Medical College,2023.
15 何小瑞,姚泰.用微量蒽酮法測(cè)定腎小管液中的微量菊糖[J].生理學(xué)報(bào),1992,44(1): 102.
HE Xiaorui,YAO Tai. A modified microanthrone method for the determination of inulin on nanogram scale[J]. Acta Physiologica Sinica,1992,44(1): 102.
16 何業(yè)通,馬麗,李文,等.檸檬桉樹(shù)脂多糖的提取純化及其抗氧化活性的研究[J].應(yīng)用化工,2022,51(8): 2 227.
HE Yetong,MA Li,LI Wen,et al. Extraction,purification and antioxidant activity of eucalyptus citriodora resin polysaccharide[J]. Applied Chemical Industry,2022,51(8): 2 227.
17 馮曉陽(yáng),徐丹鴻,楊迪,等.超聲輔助熱水浸提法制備錦燈籠果實(shí)多糖的研究[J].農(nóng)產(chǎn)品加工,2024(4): 17.
FENG Xiaoyang,XU Danhong,YANG Di,et al. Study on the preparation of polysaccharides from the fruit of brocade lantern by ultrasonic assisted hot water extraction[J]. Farm Products Processing,2024(4): 17.
18 戴志英,郭新穎,葉青華.硫酸-蒽酮分光光度法測(cè)定靈芝功能食品中粗多糖含量[J].化學(xué)工程師,2023(11): 25.
DAI Zhiying,GUO Xinying,YE Qinghua. Determination of crude polysaccharide in ganoderma lucidum functional food by sulfuric acid-anthrone spectrophotometry[J]. Chemical Engineer,2023(11): 25.
19 胡德分,劉金美,李鳳嬌,等.蒽酮-硫酸法測(cè)定烏天麻多糖含量的條件優(yōu)化[J].云南民族大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2023,32(6): 687.
HU Defen,LIU Jinmei,LI Fengjiao,et al. Determination and optimization of the polysaccharide content of Gastrodia Elata Bl. f. glauca by anthrone-sulfuric acid methods[J]. Journal of Yunnan Minzu University(Natural Sciences Edition),2023,32(6): 687.

來(lái)源:化學(xué)分析計(jì)量